人參、西洋參非傳統(tǒng)藥用部位藥理活性研究與應(yīng)用

第1篇緒論
1人參非傳統(tǒng)藥用部位的研究現(xiàn)狀6
1.1有效成分提取分離、純化工藝研究進展6
1.1.1人參有效成分的提取分離方法7
1.1.2人參有效純化的分離純化方法10
1.1.3小結(jié)12
1.2人參非傳統(tǒng)藥用部位主要化學(xué)成分的研究進展12
1.2.1人參皂苷類13
1.2.2黃酮類16
1.2.3有機酸類17
1.2.4揮發(fā)油類18
1.2.5多糖類18
1.2.6氨基酸類19
1.2.7無機元素19
1.2.8甾類19
1.2.9其他成分19
1.2.10小結(jié)20
1.3人參非傳統(tǒng)藥用部位藥理活性研究進展20
1.3.1抗腫瘤作用20
1.3.2抗氧化作用21
1.3.3延緩衰老作用21
1.3.4增強免疫力22
1.3.5保護心血管系統(tǒng)22
1.3.6對內(nèi)分泌系統(tǒng)的影響23
1.3.7促進學(xué)習(xí)記憶功能24
1.3.8降血糖作用24
1.3.9其他藥理作用25
1.3.10小結(jié)25
1.4人參非皂苷類成分的研究進展25
1.4.1人參果花青素的研究進展26
1.4.2精氨酸衍生物28
1.4.3小結(jié)31
2西洋參非傳統(tǒng)藥用部位的研究現(xiàn)狀32
2.1西洋參非傳統(tǒng)藥用部位的色素提取和脫色工藝研究進展32
2.1.1西洋參莖葉和果實中色素的提取方法33
2.1.2西洋參果脫色工藝研究34
2.1.3小結(jié)36
2.2西洋參非傳統(tǒng)藥用部位主要化學(xué)成分的研究進展36
2.2.1人參皂苷類37
2.2.2黃酮類41
2.2.3揮發(fā)油類41
2.2.4聚炔類41
2.2.5脂肪酸類42
2.2.6糖類42
2.2.7甾醇類42
2.2.8氨基酸42
2.2.9其他成分42
2.2.10小結(jié)43
2.3西洋參非傳統(tǒng)藥用部位藥理活性研究進展43
2.3.1抗腫瘤作用44
2.3.2抗氧化作用44
2.3.3降血糖和降血脂作用45
2.3.4抗心肌缺血作用46
2.3.5提高肌體免疫力46
2.3.6延緩衰老作用47
2.3.7對內(nèi)分泌系統(tǒng)的作用47
2.3.8其他藥理作用47
2.3.9小結(jié)48
3肝腎損傷保護等主要藥理學(xué)研究現(xiàn)狀49
3.1對乙?；被又赂螕p傷的研究進展49
3.1.1APAP誘導(dǎo)肝損傷潛在的機制50
3.1.2中藥以及天然藥物防治APAP誘導(dǎo)肝損傷的研究進展52
3.1.3APAP致肝損傷研究展望53
3.2順鉑致急性腎損傷的研究進展53
3.2.1順鉑致腎毒性的可能機制54
3.2.2順鉑腎毒性研究現(xiàn)狀55
3.2.3順鉑腎毒性的前景展望56

第2篇人參、西洋參非傳統(tǒng)藥用部位綜合開發(fā)與利用
1人參、西洋參非傳統(tǒng)藥用部位有效成分的工業(yè)化提取工藝流程61
1.1實驗材料61
1.2實驗方法62
1.2.1西洋參果提取62
1.2.2西洋參果浸膏分離前處理63
1.2.3大孔樹脂富集人參皂苷63
1.3小結(jié)66
2人參花蕾中丙二?；藚⒃碥盏奶崛》蛛x和結(jié)構(gòu)鑒定68
2.1儀器與實驗材料69
2.1.1主要實驗儀器69
2.1.2試劑與實驗材料69
2.1.3藥材70
2.2人參皂苷在正丁醇/水兩相的分配關(guān)系70
2.2.1樣品溶液制備70
2.2.2色譜條件70
2.2.3結(jié)果71
2.2.4討論73
2.3化合物的分離、純化、鑒定73
2.3.1概述73
2.3.2提取與富集73
2.3.3分離純化75
2.3.4人參皂苷的結(jié)構(gòu)鑒定75
2.4小結(jié)與討論102
3皂苷類成分的制備工藝優(yōu)化及轉(zhuǎn)化機理研究103
3.1人參、西洋參莖葉提取物的成分分析及熱裂解皂苷的制備工藝優(yōu)化104
3.1.1材料與方法104
3.1.2結(jié)果107
3.1.3討論125
3.1.4小結(jié)128
3.2人參莖葉總皂苷的高效利用及熱裂解皂苷Rk1和Rg5的轉(zhuǎn)化機理探究128
3.2.1儀器、材料與試劑129
3.2.2人參皂苷Rk1和Rg5的制備及優(yōu)化129
3.2.3結(jié)果135
3.2.4小結(jié)135
4二醇組皂苷Rb1轉(zhuǎn)化成Rg5的條件優(yōu)化136
4.1實驗儀器與試劑136
4.1.1儀器136
4.1.2試劑136
4.2實驗方法與結(jié)果137
4.2.1HPLC分析137
4.2.2單因素實驗138
4.2.3正交試驗分析139
4.3小結(jié)140

第3篇人參、西洋參非傳統(tǒng)藥用部位藥理活性研究
1GSLS對順鉑致腎損傷的保護作用及機制研究144
1.1材料與方法144
1.1.1藥品與試劑144
1.1.2實驗動物145
1.1.3實驗設(shè)計145
1.1.4體重變化和臟器系數(shù)的測定145
1.1.5血清中CRE、BUN和腎組織中GSH、CAT的測定145
1.1.6血清中TNF-α和IL-1β炎癥因子的測定146
1.1.7腎組織病理學(xué)分析146
1.1.8腎小管細胞凋亡檢測147
1.1.9統(tǒng)計學(xué)方法147
1.2實驗結(jié)果147
1.2.1GSLS對CDDP致腎損傷小鼠體重及臟器系數(shù)的影響147
1.2.2GSLS對CDDP 致腎損傷小鼠血清中BUN、CRE水平及腎組織中GSH和CAT含量的影響148
1.2.3GSLS 對CDDP 致腎損傷小鼠血清中TNF-α和IL-1β水平的影響148
1.2.4GSLS 對 CDDP 致腎損傷小鼠組織形態(tài)的影響149
1.2.5GSLS 對CDDP 致腎損傷小鼠細胞凋亡的影響151
1.3討論153
1.4小結(jié)154
2PQS對對乙酰氨基酚致肝損傷的保護作用及機制研究155
2.1材料與方法155
2.1.1材料與試劑155
2.1.2儀器156
2.1.3實驗動物和細胞系156
2.1.4動物實驗設(shè)計157
2.1.5肝組織中生物學(xué)指標(biāo)檢測157
2.1.6肝組織中炎癥指標(biāo)檢測157
2.1.7組織病理學(xué)分析157
2.1.8Hoechst 33258染色157
2.1.9TUNEL染色158
2.1.10免疫組織化學(xué)以及免疫熒光染色158
2.1.11蛋白質(zhì)印跡法158
2.1.12HepG2細胞實驗設(shè)計159
2.1.13統(tǒng)計分析159
2.2結(jié)果159
2.2.1PQS對小鼠體重以及器官指數(shù)的影響159
2.2.2PQS對生物學(xué)指標(biāo)的影響160
2.2.3PQS改善APAP誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激160
2.2.4PQS改善APAP誘導(dǎo)的硝化應(yīng)激163
2.2.5PQS改善APAP誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)163
2.2.6PQS改善APAP誘導(dǎo)的肝組織病理學(xué)改變165
2.2.7PQS改善APAP誘導(dǎo)的肝細胞凋亡165
2.2.8PQS對HepG2細胞損傷的保護作用165
2.3討論168
2.4小結(jié)170
3PQS對順鉑致腎損傷的保護作用及機制研究171
3.1實驗材料172
3.1.1藥材與試劑172
3.1.2實驗儀器172
3.1.3實驗動物172
3.2實驗方案173
3.2.1血清中BUN、CRE及腎組織中GSH、SOD和MDA含量的測定173
3.2.2血清中炎癥因子的測定173
3.2.3組織切片病理學(xué)檢測173
3.2.4Hoechst 33258染色分析174
3.2.5TUNEL染色分析174
3.2.6免疫組織化學(xué)染色174
3.2.7免疫熒光染色分析174
3.2.8實時定量PCR175
3.2.9蛋白質(zhì)印跡法175
3.2.10數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析175
3.3結(jié)果175
3.3.1PQS對小鼠體重、腎指數(shù)和腎功的影響175
3.3.2PQS對小鼠腎組織中氧化應(yīng)激的影響176
3.3.3PQS對小鼠腎組織病理學(xué)變化的影響177
3.3.4PQS對小鼠體內(nèi)炎癥的影響179
3.3.5PQS對小鼠體內(nèi)腎細胞凋亡的影響182
3.4討論184
3.5小結(jié)186
4GFG對對乙酰氨基酚致肝損傷的保護作用及機制研究187
4.1材料與方法188
4.1.1實驗動物188
4.1.2材料儀器188
4.1.3藥物配制188
4.1.4動物分組及處理189
4.1.5計算免疫器官指數(shù)189
4.1.6血清學(xué)指標(biāo)189
4.1.7氧化應(yīng)激指標(biāo)189
4.1.8炎癥指標(biāo)189
4.1.9H&E染色189
4.1.10Hoechst 33258染色190
4.1.11免疫組織化學(xué)染色190
4.1.12免疫熒光染色190
4.1.13統(tǒng)計學(xué)方法191
4.2結(jié)果191
4.2.1GFG對APAP誘導(dǎo)小鼠肝損傷臟器指數(shù)的影響191
4.2.2GFG對APAP誘導(dǎo)小鼠血清指標(biāo)的影響191
4.2.3GFG對小鼠肝臟中GSH和MDA的影響192
4.2.4GFG對小鼠肝組織炎癥因子的影響192
4.2.5GFG對小鼠肝組織病理變化的影響193
4.2.6GFG對小鼠肝組織細胞凋亡的影響193
4.2.7GFG對小鼠肝組織COX-2和Bax蛋白表達的影響194
4.2.8GFG對小鼠肝組織4-HNE和CYP2E1表達的影響195
4.3討論196
4.4小結(jié)196
5GFA對藥源性肝腎損傷的保護作用197
5.1GFA對對乙酰氨基酚致肝損傷的保護作用及機制研究197
5.1.1材料與方法197
5.1.2結(jié)果200
5.1.3討論204
5.1.4小結(jié)206
5.2GFA對順鉑致腎損傷的保護作用及機制研究206
5.2.1材料與方法206
5.2.2結(jié)果210
5.2.3討論218
5.2.4小結(jié)220
6AGB對對乙酰氨基酚致肝損傷的保護作用及機制研究221
6.1材料與方法221
6.1.1材料與試劑221
6.1.2儀器223
6.1.3實驗動物223
6.1.4動物實驗設(shè)計223
6.1.5肝組織中生物學(xué)指標(biāo)檢測223
6.1.6肝組織中炎癥指標(biāo)檢測224
6.1.7組織病理學(xué)分析224
6.1.8Hoechst 33258染色224
6.1.9TUNEL染色224
6.1.10免疫熒光染色224
6.1.11Western Blot225
6.1.12統(tǒng)計分析225
6.2結(jié)果225
6.2.1AGB對血清中GPT和GOT的影響225
6.2.2AGB改善APAP誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激226
6.2.3AGB改善APAP誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)228
6.2.4AGB改善APAP誘導(dǎo)的肝組織病理學(xué)改變228
6.2.5AGB改善APAP誘導(dǎo)的肝細胞凋亡231
6.3討論232
6.4小結(jié)235
7AGB對順鉑致腎損傷的保護作用及機制研究236
7.1實驗材料236
7.1.1藥材與試劑236
7.1.2實驗儀器237
7.1.3實驗動物237
7.2實驗方案237
7.2.1血清中腎功指標(biāo)檢測238
7.2.2血清中炎癥因子的測定238
7.2.3腎組織中氧化指標(biāo)的測定238
7.2.4H&E染色分析238
7.2.5Hoechst 33258染色分析238
7.2.6TUNEL染色分析239
7.2.7免疫組織化學(xué)染色239
7.2.8免疫熒光染色分析239
7.2.9Western Blot分析239
7.2.10數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析239
7.3結(jié)果240
7.3.1AGB對小鼠體重、腎指數(shù)和腎功的影響240
7.3.2AGB對小鼠體內(nèi)氧化應(yīng)激的影響240
7.3.3AGB對小鼠組織病理學(xué)變化的影響241
7.3.4AGB對順鉑誘導(dǎo)的細胞凋亡的影響241
7.3.5AGB對順鉑誘導(dǎo)的MAPK信號通路激活的影響246
7.3.6AGB對順鉑誘導(dǎo)的NF-κB信號活化的影響248
7.4討論249
7.5小結(jié)252

參考文獻253